BIOLOGÍA MOLECULAR
La Figura 1 muestra los resultados de la amplificación del ITS-2+ de las treinta muestras de Paramphistómidos amplificaron fragmentos idénticos cuyas longitud de bandas fueron aproximadamente de ~ 500 bp al igual que el control positivo Paramphistomun leydeni que a pesar de su hospedador definitivo son ovinos, es usado debido a que pertenece a la familia.
Figura 1.
Gel de agarosa teñido con SYBRsafe (Invitrogen) mostrando los productos de PCR conteniendo los ITS-2+ de 30 muestras de Paramphistómidos colectados de vacunos.
Panel A: Calle L Marcador de peso molecular (100pb)
Calle +:
Calle – : Control negativo (sin muestra)
Calle 1 – 15: Muestras 1 – 15
Panel B: Calle L: Marcado de peso molecular (100 pb.)
Calle +: Muestra de Paramphistomum leydeni
Calle -: Control negativo (sin muestra)
Calle 16 – 30: Muestras 16 – 30.
Los análisis de RFLP de los productos del PCR, utilizando las endonucleasas HinfI y Tru1I no mostraron diferencias significativas de los patrones de restricción en las treinta muestras analizadas. Pero si se observó marcada diferencia entre las treinta muestras y el control positivo (Paramphistomun leydeni), el cual es usado para contrastar el género de los parásitos. El peso molecular aproximado de los fragmentos producidos por cada endonucleasa se muestra en la Tabla 1.
Tabla 1. Resultados de RFLP de las enzimas de restricción mostrando aproximadamente la longitud expresada en pares de bases (bp) y número de fragmentos. El tamaño de los fragmentos fue determinado con el software GelAnalyzer2010®.
La figura 2 muestra los patrones de bandas de PCR-RFLP para la endonucleasa de restricción Tru1I en donde el control positivo (Paramphistomun leydeni) muestra un patrón de tres fragmentos de aproximadamente 60 bp, 150 bp y 190 bp; en contraste con el ADN amplificado de los treinta parásitos analizados, los cuales muestran un solo patrón de banda de aproximadamente 470 bp Figura 2. Gel de agarosa al 2 % teñido con SYBRsafe mostrando los patrones de RFLP de los ITS-2+ amplificados con la endonucleasa Tru1I, de 30 muestras de Paramphistómidos colectados de vacunos.
Panel A: Calle L: Marcador de peso molecular (100pb.)
Calle+: Muestra de Paramphistomun leydeni Calle –: Control negativo (sin muestra
Calle 1 – 15: Muestras 1 – 15
Panel B: Calle L: Marcado de peso molecular (100pb.)
Calle +: Muestra de Paramphistomum leydeni Calle -: Control negativo (sin muestra)
Calle 16 – 30: Muestras 16 – 30
La Figura 3 muestra los patrones de bandas de PCR-RFLP para la endonucleasa de restricción HinfI, en donde el control positivo (Paramphistomun leydeni) muestra un patrón de tres fragmentos de aproximadamente 130 bp, 170 bp y 200 bp; en contraste con la del ADN amplificado de los treinta parásitos analizados, los cuales muestran dos fragmentos de aproximadamente 217 bp y 250 bp.
Figura 3. Gel de agarosa al 2% mostrando patrones de RFLP de los ITS-2+ amplificados de 30 muestras de Paramphistómidos colectados de vacunos con la endonucleasa HinfI.
Panel A: Calle L: Marcador de peso molecular (100 pb.)
Calle+ : Muestra de Paramphistomun leydeni
Calle – : Control negativo (sin muestra)
Calle 1 – 15: Muestras 1 – 15
Panel B: Calle: Marcado de peso molecular (100 pb.)
Calle +: Muestra de Paramphistomum leydeni
Calle – : Control negativo (sin muestra)
Calle 16 – 30: Muestras 16 – 30
El fragmento ITS-2+ de los especímenes secuenciados muestran una secuencia consenso de 427 bp, la cual está compuesta de la secuencia entera ITS-2 (283 bp), más las secuencias de los extremos, 5.8S (119 bp) y 28S (25 bp). Se compara la secuencia consenso final obtenida con otras secuencias disponibles en internet utilizando el programa BLAST (NCBI), e inscritas en el GenBank ®.
GCCAACTGTGGTGGAAGTTTAAGTGTGAACTGCATACGTGCTGTTTGAACATCGACAGTCGTTGAACGCACATTGCGGCCACGGGTTTTCCTGTGGCCACGCCTGTCCGAGGGTCGGCTTATAAACTATCACGACGCCCAAAAAGTCGTGGCTTGGAATCTGCCAGCTGGCGTGATTTCCTCTGTGGTTCGCCACGTGAGGTGCCAGATCTATGGCGTTTTCCTAATGTCTCCGGACACAACCGCGTCTTGCTGGTAGCGCAGACGAGGGTGTGGCGGTAGAGTCGTGGCTCAATGAACTGTAATGGTAGCACGCTCTGCCGTTGTGCCTTTGTTAGTGTAACTGGTTTGAGATGCTATTGCTGTCCGCCCAATCATGATCACCTGCTATGGTGTTCTGTTACCTGACCTCGGATCAGACGTGAATA
Figura 4. Secuencia consenso de Calicophoron. microbothrioides con longitud de 427 bp. Secuencia completa del ITS2 de 283 bp (subrayado). Secuencia parcial subunidad ribosómica 5.8 S de 119 bp (antes de subrayar). Secuencia parcial subunidad ribosómica 28 S de 25 bp (después del subrayado).
La Figura 5 muestra un dendograma, el cual es elaborado por el programa BLAST (NCBI), para reconocer la distancia en el árbol filogenético con referencia a otras especies. Por lo tanto, teniendo en cuenta todas las muestras secuenciadas en ambos sentidos (adelante y atrás), se obtuvo una secuencia consenso con 99% de identidad con Calicophoron microbothrioides.
Figura 5. Árbol de la distancia de la secuencia consenso de amphistomas de Cajamarca (kcl|12225) alineado por BLASTN ®, mostrando una homología de 99 % con Calicophoron micobothrioideS. (Fuente Manrrique. A 2013).
LOCALIZACIÓN
El parásito adulto se localiza en el rumen especialmente en la superficie dorsal del pilar anterior y en la porción dorsal y ventral del pilar posterior, retículo y omaso.
Las formas juveniles se pueden encontrar en el abomaso e intestino delgado, raramente en las vías biliares.
UBICACIÓN
HOSPEDEROS
Hospedadores definitivos
Se considera como hospedadores definitivos a los herbívoros entre los que encontramos: A los Bovinos, siendo estos los hospedadores más comunes, seguidos de ovinos y caprinos también se podrían tener en cuenta a los camélidos aunque en menor escala.
Hospedadores Intermediarios
Los Hospedadores Intermediarios son los moluscos pulmonados de agua dulce. Estos moluscos pertenecen principalmente a las familias: Planorbidae (Planorbis, Segmentina, etc.), Bulinidae (Bulinus) y Lymnaeidae (Lymnaea).
CICLO BIOLÓGICO
Cuando los huevos son eliminados, mezclados con las excretas del hospedero definitivo, se encuentran, en los primeros estadios de la segmentación. El tiempo de desarrollo varía según la temperatura, in vitro es de aproximadamente 44 días. Cuando los miracidios abandonan el huevo, nadan en el agua y penetran en un caracol acuático a través del neumostoma posterior de la cavidad del manto; también, pueden penetrar por las partes expuestas del caracol. Al respecto, los caracoles jóvenes son más receptivos que los mayores, porque la cavidad del manto está completamente llena de agua y la abertura pulmonar está siempre abierta. Los hospedadores intermediarios son los Caracoles de los géneros: Bulinus, Glyotanusis, Indoplanorbis, Limnaea, Norbis, Pseudosuccinea, Fossaria, Phygmanisus y Glyptanisus.
Posteriormente, los miracidios pierden los cilios superficiales y al cabo de unas 12 horas, se forma un esporocisto alargado de 93 por 53 mm.
El desarrollo en el caracol en condiciones favorables (26 – 30 °C) puede completarse en cuatro semanas. Existe un gran desarrollo de los esporocistos al cabo de 11 días, encontrándose ya maduros y conteniendo cada uno de ellos un máximo de ocho redias, éstas se liberan y experimentan un notable crecimiento y, al cabo de unos 21 días post infestación, miden entre 0.5 y 1 mm. de longitud, y contienen entre 15 y 30 cercarías. En ciertas condiciones se forman redias hijas. Cuando las cercarias son eliminadas de las redias, aún son inmaduras y necesitan un tiempo de maduración en los tejidos del molusco antes de ser eliminadas. Este periodo a 27°C es de 13 días.
Las cercarias son eliminadas del caracol cuando son estimuladas por la luz. Las cercarías liberadas son fácilmente reconocibles como «anfistoma» por la presencia de la ventosa oral y la posterior. Son activas por algunas horas, y luego se enquistan en la vegetación u materia orgánica que se encuentran en el agua. Al cabo de unos 10 minutos, el enquistamiento se ha completado, y las nuevas metacercarías se oscurecen hasta ser casi negras. La viabilidad de esta fase se mantiene durante un periodo de alrededor de tres meses. Después de la ingestión de las metacercarias enquistadas en los vegetales, todo el desarrollo en el hospedero definitivo tiene lugar en el tracto digestivo. Después de desenquistarse en el duodeno y abomaso las fases juveniles se fijan y alimentan en dicha localización durante aproximadamente seis semanas antes de desplazarse hacia el rumen, retículo y omaso donde alcanzan la madurez. El periodo de prepatencia oscila entre 7 y 10 semanas. Los huevos aparecen en las heces a los 56 días en los bovinos, en 69 días en caprinos y a los 71 días en ovinos.
DIFERENTES ESTADIOS EVOLUTIVOS
Huevos: Los huevos miden de 140 a 150 µm de largo por 65 a 85µm de ancho, tienen forma ovalada (el polo operculado es más fino que el opuesto). A diferencia de los huevos de Fasciola hepatica, los del Calicophoron microbothridioides son más claros y tienen el cigoto localizado en la parte medial posterior (en la Fasciola hepatica se localiza en la posición medial anterior). La cubierta es delgada e incolora y las células embrionarias se encuentran completamente delimitadas. En el polo posterior se observa una protuberancia.
Miracidio: Es la forma infectiva para el hospedero intermediario. El miracidio es ancho en su parte anterior con una papila móvil y una glándula apical, que permiten la penetración en el caracol (hospedero intermediario). Su tegumento se halla recubierto de cilios que permiten su desplazamiento en el agua.
Esporocisto: Es la primera forma larvaria que se desarrolla dentro del molusco, es de forma sacciforme de 93 por 53 µm. Al cabo de 11 días los esporocistos ya están maduros y contienen cada uno de ellos un máximo de 8 redias.
Redia: Miden de 1.2 por 0.15 mm de tamaño, los cuales después de 20 días, se liberan y producen redias hijas, y a los 39 días, a nivel de las glándulas del intestino medio producen redias nietas.
Cercaría: Las cercarías maduras de color marrón oscuro y poseen 2 manchas oculares. Miden de 350 a 280µm (cercarías pigmentadas), poseen una cola propulsora más larga que el cuerpo y una faringe de 50µm. Las cercarías abandonan los caracoles en momentos de gran claridad, en condiciones óptimas en horas de mayor intensidad solar nadan cerca de la superficie del agua de un lado para otro y se fijan a las plantas.
Metacercaria: Forma quística infectiva, que son ingeridas por los animales que pastan, mide 250µm y están rodeados de unas membranas resistentes, una externa de estructura fibrosa y otra interna.
Calicophoron microbothrioides adulto al estado fresco:
El color de los ejemplares adultos vivos es rojo claro o rosado, cuerpo piriforme, ligeramente cóncavo ventralmente y convexo dorsalmente, el cuerpo está recubierto por un tegumento con papilas distribuidas por todas las regiones. Los vermes miden alrededor de 5 a 13 por 2 a 5 mm de diámetro. Poseen una ventosa ventral terminal más grande y potente que la oral.
La ventosa oral se encuentra en el polo anterior más delgado. La abertura genital o poro genital se encuentra al final del primer tercio del cuerpo. Los testículos son ligeramente lobulados, localizados en la mitad posterior del cuerpo y anteriores al ovario.
El parásito en estado fresco es de color rosado pálido a rosado claro, de forma cónica no aplanada, con un promedio de 9±0.76mm de largo y con un promedio de 2mm de diámetro en el extremo anterior, con 4 ± 0.76 mm de ancho y 2 mm de diámetro aproximadamente en el extremo anterior, con 4 ± 0.88 mm de diámetro en el extremo posterior. Y 1 mm de diámetro en la ventosa oral ubicada en el extremo anterior y 1.5 ±0.5 mm de diámetro en la ventosa ventral ubicada en extremo posterior.
PATOGENIA
La enfermedad clínica aparece sólo cuando hay enormes cantidades de parásitos inmaduros en duodeno y abomaso, y las que emigran producen enteritis aguda. Los trastornos clínicos producidos por los tremátodos adultos fijados a la mucosa del rumen retículo y omaso, son menores que los originados por las fases juveniles emigrantes, las cuales provocan gastroenteritis aguda o crónica. En el ganado joven muchas veces tiene curso mortal, aunque en el mayor número de los casos el cuadro clínico se caracteriza por diarreas sanguinolentas. En infecciones intensas, los tremátodos adultos provocan una lesión de la capa superficial y de los tejidos subyacentes del rumen. Las formas adultas en el rumen llegan a destruir gran parte de la mucosa ruminal en donde se encuentran implantados. Los tremátodos inmaduros se incrustan en la mucosa del duodeno-yeyuno y nódulos linfáticos del mesenterio. Aparece infiltración edematosa en la pared intestinal, existiendo también enteritis hemorrágica y destrucción de las células glandulares y nerviosas. Hay necrosis tisular debido a la destrucción celular y a la reabsorción de sustancias tóxicas. La acción mecánica llega a la submucosa destruyendo las glándulas digestivas del intestino delgado y del abomaso ocasionando un síndrome de mala digestión y mala absorción. Los parásitos jóvenes en contacto con la submucosa ejercen una acción antigénica con impregnación de tejido linfoide y la formación de anticuerpos. La gravedad que ocasiona la acción expoliatriz está en relación directa a la cantidad de parásitos pues su alimentación está basada en líquidos y células del lugar donde se albergan. Además producen daño traumático, tanto los tremátodos adultos e inmaduros, por la fijación de su ventosa ventral succionando parte de la mucosa y perturbando la irrigación sanguínea, con pérdida de sangre, lo que puede explicar la anemia de esta parasitosis. Los animales infectados pueden desmejorar rápidamente. Suele aparecer edema debajo del maxilar inferior (quijada de botella) y presentarse diarrea negruzca de olor fétido. Debido a que la enfermedad aguda es provocada por la forma inmadura, usualmente no se encuentran huevos en las heces. En la necropsia, las fases juveniles aparecen apiñadas, de color rosa pardo y unidas a la mucosa duodenal, ocasionalmente también se encuentran en el yeyuno, abomaso, y en el rumen las formas maduras se encuentran bien adheridas a la mucosa.
PATOGENIA DEL CALICOPHORON MICROBOTHRIDIOIDES
